在針對腫瘤的靶向研究方面，花青熒光團所具有的結構固有腫瘤靶向（SITT）特性，由于不再需要與靶向配體進行結合，已越來越受到科學界的關注。然而，SITT背后的靶向機制尚未得到很好的解釋。
另一方面，腫瘤組織中含有大量的免疫細胞，包括骨髓來源和/或組織駐留的腫瘤相關免疫細胞（TRICs/TAICs），這些TAICs可以成為癌癥檢測的主要靶標，但目前尚缺乏對于靶標免疫細胞的小分子熒光基團的研究報道。
在此，我們很高興可以分享一項來自哈佛大學醫學院與麻省總醫院Homan Kang博士團隊的最新研究成果，受前期在器官及疾病特異性熒光團開發方面的成功經驗啟發（參見：前沿分享 | 哈佛大學醫學院：一種用于靶向治療GIST腫瘤的非粘性、腎臟可清除納米平臺），該團隊設計并合成了一種靶向TAICs的花青熒光團SH1，并利用SH1證實了與SITT相關的腫瘤靶向機制。
在實際應用方面，SH1具有近紅外二區（NIR-II，1000-1700 nm）成像能力，能夠在活體組織（如骨髓、腦血管和腫瘤血管）內進行深層組織成像，顯著降低組織的自發熒光和散射，具有很高的臨床適用性；此外，因TAIC介導的腫瘤靶向性，SH1無需與額外的靶向配體偶聯即可具有廣泛的腫瘤靶向性，展現出高腫瘤-背景比（TBR）。作為一種充滿潛力的癌癥靶向劑，SH1在術中光學成像和圖像引導的癌癥手術中將具有巨大的應用前景。

部分實驗設計與結果分享如下：

• SITT腫瘤靶向機制探究

將靶向TAICs的熒光團SH1靜脈注射到荷瘤小鼠體內，觀察到癌變區域的信號并未在早期時間點出現，而是在數小時后突然出現（圖1）。與此同時，熒光團在骨髓中的免疫細胞中積累，并隨免疫細胞浸潤到癌變區域，導致熒光信號強度隨時間的推移而增強，信號-背景比（SBR）也顯著增強（圖1A，C）。此外，利用NIR-II成像的深層組織穿透能力，可在注射后24 h清楚地觀察活體小鼠的脊柱、胸骨和后肢中的骨髓（圖1C）。據此，推斷SH1具有兩種不同的腫瘤靶向機制（圖1D）：①通過體循環直接到達癌變區域，并且在長達24 h的時間內被腫瘤細胞和腫瘤相關免疫細胞吸收；②被骨髓中的免疫細胞內化后，隨免疫細胞浸潤到癌變區域。

圖1 NIR-II熒光成像和SITT腫瘤靶向機制

（將50 nmol的SH1靜脈注射到胰腺導管腺癌（PDAC）小鼠模型中。紅色圓圈和虛線表示感興趣區域。激發光：808 nm，濾光片：1070 nm LP，曝光時間：50 ms。）

A）B）腫瘤組織和脊柱骨髓中信號隨時間的變化

C）SH1在脊柱、胸骨和后肢骨髓中的攝取情況

D）SH1熒光團靶向腫瘤的兩步機制示意圖：

①直接靶向腫瘤細和腫瘤相關免疫細胞；

②被靶向后的腫瘤相關免疫細胞通過血管遷移，浸潤到癌變區域。

• 基于花青的SH1熒光團設計

對各種花青熒光團進行體內篩選后，研究人員設計并合成了SH1（圖2A），其光學和物理化學性質，如吸光度和熒光光譜、電荷分布和極化率等如圖2B-D所示。SH1具有較長的NIR-I區發射波長（最大值820 nm）和NIR-II區發射尾（尾發射高達~1250 nm，這是其具有NIR-II成像能力的關鍵）。在5% BSA鹽溶液中，與市售的NIR-II染料IR-E1050和IR26相比，SH1具有更高的量子產率（SH1：11%，IR-E1050：0.2-2%，IR26：0.05-0.5%）。同時，與吲哚菁綠（ICG，FDA唯一批準的可用于體內NIR-II成像的熒光染料）相比，SH1在NIR-II區具有更高的熒光亮度（225%）。

圖2 SH1熒光團設計圖示及光學、理化性質

• 評估SH1靶向的細胞類型

利用流式細胞術，評估骨髓和腫瘤TAICs中SH1的靶細胞類型。結果表明，SH1靶向的大多是骨髓中的免疫相關細胞，如巨噬細胞、單核細胞、淋巴細胞、中性粒細胞和樹突狀細胞（圖3）。此外，通過免疫組織化學染色和組織學熒光分析，可以觀察到由于靶向免疫細胞的浸潤，導致腫瘤組織中的熒光信號顯著增加（圖3C）。

圖3 骨髓和腫瘤組織中SH1靶向的免疫細胞

將SH1、ICG和IR-780注射到LLC荷瘤小鼠體內，SH1可在注射后48 h時在腫瘤區域顯示出極好的信號強度，而ICG由于快速被肝膽清除而沒有顯示出良好的腫瘤靶向性（圖4A，C）。IR-780顯示出與SH1不同的腫瘤積累模式，在注射后4h左右的早期時間點在腫瘤中積累。

另一方面，研究人員創新地引入了三維（3D）熒光斷層掃描（FLECT/CT）成像技術，對注射后24 h和48 h時每種染料在癌癥區域的百分比劑量（%ID）進行定量評估（圖4G；圖5）。結果顯示，從注射后24 h到48 h，SH1的%ID增加了2倍以上，這一結果有力地支持了研究人員此前的推斷，即隨著時間的推移，SH1靶向的TAICs遷移會增強腫瘤-背景比（TBR）。


圖4 對LLC荷瘤小鼠進行SH1腫瘤靶向的體內成像，并與IR-780和ICG作比較
A）各染料注射后48 h內進行NIR-II熒光成像；
C）48h內腫瘤部位的信號強度變化；
G）使用兼具x-ray CT功能的3D熒光斷層掃描（FLECT/CT）成像技術，對各染料在注射后24h和48 h的腫瘤積累進行相對定量分析。
綠色區域表示用于定量分析的感興趣體積（VOI），與傳統二維成像中的感興趣區域（ROI）相比，對目標部位進行三維體積層面的數據采集，可以使分析內容更加接近體內真實情況，獲得更加準確的定量分析結果，而二維光學成像往往無法滿足精確定位與定量分析的需求。

圖5 利用3D熒光斷層掃描（FLECT/CT）成像技術對腫瘤部位的信號積累進行相對定量分析

A）B）LLC荷瘤小鼠在注射標準樣品后24 h和48 h的3D熒光斷層圖像
（FLECT/CT：一種將三維熒光斷層掃描與x-ray CT相結合的多模態成像系統。FLECT掃描：以每層116個投影、780 nm激光激發和853/45 nm帶通熒光發射濾光片進行。CT掃描：采用每層360個投影、35 kV管電壓、950 μA管電流和100 ms曝光進行。使用VivoQuant圖像分析軟件對3D熒光圖像進行定量分析，且FLECT圖像和CT圖像可以在VivoQuant軟件中互相配準，實現對目標信號的準確定位。）
C）D）對填充有不同濃度梯度（2.5、5、10 μM）的熒光染料標準樣品進行連續掃描，并執行上述VOI分析，制作濃度和信號強度曲線，線性回歸方程擬合優度（R2）＞0.999，證明FLECT/CT的線性響應性能完全符合要求，定量分析結果準確可靠。
E）定量結果匯總數據。
技術亮點：
通過本項研究，Homan Kang博士團隊首次闡明了TAIC介導的腫瘤靶向機制，并利用流式細胞術、組織學、體內NIR-II熒光成像以及新型的3D熒光斷層成像（FLECT/CT）技術進行證實。SH1的NIR-II功能允許操作人員觀察活體深層組織中的信號，而FLECT/CT技術則可以在獲取三維NIR熒光圖像的同時，實現準確的定位與定量分析功能。實驗過程中，相關的三維成像操作與數據定量分析工作，均由InSyTe™ FLECT/CT系統研發團隊的Austin Moy博士（TriFoil Imaging）協助完成，因FLECT/CT成像技術作為下一代分子成像技術、在三維熒光斷層掃描與定量分析方面所具有的創新性和先進性，Moy博士也成為本項研究的合著作者之一。

原文標題：Tumor-Associated Immune-Cell-Mediated Tumor-Targeting Mechanism with NIR-II Fluorescence Imaging

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