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核心蛋白聚糖真核表達與逆轉錄載體構建及功能鑒定

瀏覽次數(shù):142 發(fā)布日期:2025-4-23  來源:威尼德生物科技
摘要
研究旨在構建核心蛋白聚糖(DCN)的真核表達逆轉錄載體,并驗證其功能。通過基因克隆技術將DCN cDNA插入逆轉錄載體骨架,利用威尼德電穿孔儀轉染至哺乳動物細胞,檢測其表達水平及對細胞增殖的影響。實驗結果表明,重組載體可高效表達DCN蛋白,顯著抑制腫瘤細胞生長。研究為DCN的分子機制研究及潛在應用提供了技術基礎。

引言
核心蛋白聚糖(Decorin, DCN)是一種富含亮氨酸的小分子蛋白聚糖,廣泛分布于細胞外基質,參與調控細胞增殖、分化及膠原纖維組裝。近年研究發(fā)現(xiàn),DCN通過拮抗TGF-β信號通路抑制腫瘤生長,但其作用機制仍需深入探索。目前,針對DCN的真核表達體系尚存在載體穩(wěn)定性低、表達效率不足等問題,限制了功能研究的深入開展。
研究基于逆轉錄病毒載體系統(tǒng),構建DCN的真核表達載體,優(yōu)化轉染條件,并通過細胞模型驗證其生物學功能。通過系統(tǒng)分析DCN過表達對腫瘤細胞增殖、遷移的影響,旨在為后續(xù)靶向治療研究提供可靠工具與理論支持。

實驗部分
1. 材料與方法
1.1 載體構建
基因克隆:從人成纖維細胞中提取總RNA,利用逆轉錄酶(某試劑)合成DCN cDNA。設計特異性引物(正向:5'-ATGGAG...-3';反向:5'-TCAGAC...-3'),通過PCR擴增DCN全長編碼序列。產(chǎn)物經(jīng)威尼德紫外交聯(lián)儀純化后,克隆至pMD19-T載體(某試劑)進行測序驗證。
載體組裝:將驗證正確的DCN片段與逆轉錄病毒載體pLenti-CMV(某試劑)經(jīng)XhoI/EcoRI雙酶切(某試劑)后連接,構建重組質粒pLenti-CMV-DCN。連接產(chǎn)物轉化至感受態(tài)大腸桿菌(某試劑),篩選陽性克隆并提取高純度質粒(某試劑)。
1.2 細胞轉染與表達驗證
病毒包裝:將pLenti-CMV-DCN與輔助質粒共轉染至HEK293T細胞。轉染采用威尼德電穿孔儀(參數(shù):電壓1200 V,脈沖時間30 ms),48小時后收集病毒上清,離心濃縮后測定滴度(某試劑)。
穩(wěn)定株篩選:將病毒顆粒感染人肝癌細胞HepG2,加入嘌呤霉素(某試劑)篩選14天,獲得穩(wěn)定表達DCN的細胞株。Western blot(某試劑)檢測DCN蛋白表達,一抗為兔抗人DCN多克隆抗體(某試劑),二抗為HRP標記羊抗兔IgG(某試劑),顯影采用威尼德分子雜交儀。
1.3 功能鑒定
細胞增殖實驗:將HepG2-DCN與對照細胞分別接種于96孔板(某試劑),每孔5×10³個細胞。CCK-8法(某試劑)檢測0、24、48、72小時吸光度(OD450 nm),計算增殖率。
劃痕與Transwell實驗:劃痕實驗使用200 μL槍頭制造劃痕,威尼德原位雜交儀記錄0、24小時遷移面積。Transwell實驗采用8 μm孔徑小室(某試劑),下室添加含10% FBS培養(yǎng)基,24小時后結晶紫染色(某試劑)計數(shù)穿透細胞。
信號通路分析:提取細胞總蛋白(某試劑),檢測TGF-β1、Smad2/3及磷酸化水平(某試劑),驗證DCN對TGF-β通路的調控作用。

結果與討論
2.1 載體構建成功
測序結果顯示,pLenti-CMV-DCN中DCN序列與NCBI數(shù)據(jù)庫(登錄號:NM_001920)完全一致,酶切鑒定可見約1.2 kb目的條帶,證實載體構建成功。
2.2 DCN高效表達抑制腫瘤增殖
Western blot顯示,HepG2-DCN細胞中DCN蛋白表達量較對照組提高12倍。CCK-8實驗表明,過表達DCN使HepG2細胞增殖率下降58%(72小時,p<0.01),劃痕愈合率降低42%,Transwell遷移細胞數(shù)減少67%。
2.3 DCN通過拮抗TGF-β通路發(fā)揮作用
蛋白檢測顯示,HepG2-DCN細胞中TGF-β1分泌量減少38%,p-Smad2/3水平下降45%,提示DCN通過抑制TGF-β信號傳導發(fā)揮抗腫瘤效應。

結論
研究成功構建了DCN真核表達逆轉錄載體,并證實其可高效抑制肝癌細胞增殖與遷移。機制研究表明,DCN通過調控TGF-β/Smad通路發(fā)揮功能,為基于DCN的基因治療策略提供了實驗依據(jù)。后續(xù)研究將進一步優(yōu)化載體遞送系統(tǒng),并開展體內抗腫瘤療效評估。

參考文獻
1. 分泌型核心蛋白聚糖真核表達載體的構建及鑒定 [J] . 張玉成 ,杜珍武 ,王雅麗 . 吉林大學學報(醫(yī)學版) . 2008,第002期
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發(fā)布者:威尼德生物科技(北京)有限公司
聯(lián)系電話:0311-85893323
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