同時，可實現核酸檢測的絕對定量。達普生物研發團隊全程參與了該技術的發明。

數字 PCR（dPCR）技術由于其絕對定量的能力和極高的靈敏度，被廣泛的應用于分子診斷領域。然而，與目前的金標準定量 PCR （qPCR）相比，dPCR 在動態范圍方面落后了 3~4 個數量級，這極大地限制了其在臨床領域的應用。例如，對一些載量范圍波動較大的病毒感染樣本進行定量時，高載量的樣本往往會使 dPCR 顯全陽性而無法通過泊松分布定量。因此，亟需開發一種比目前的 dPCR 動態范圍更大且簡便易用的新的 dPCR 策略。

近期，上海科技大學劉一凡課題組與中科院上海微系統所、南方醫科大學南方醫院團隊合作開發了熒光編碼對數稀釋數字 PCR 技術（Flodd-PCR），該方法展示出的動態范圍為 10⁷，比傳統 dPCR 高了逾兩個量級。相關研究成果以“Fluorescence-coded logarithmic-dilution digital droplet PCR for ultrawide-dynamic-range nucleic acid quantification”為題，發表在《Biosensors and Bioelectronics》上（DOI：doi.org/10.1016/j.bios.2023.115702）。上海科技大學物質科學與技術學院劉一凡課題組 2023 屆碩士畢業生施清源、2021 級博士研究生李婕、南方醫科大學南方醫院檢驗科劉春辰博士為本文共同第一作者，上海科技大學劉一凡研究員、中科院微系統研究所羅源副研究員、南方醫科大學南方醫院鄭磊教授為本文通訊作者。數字PCR設備（Nebula 全自動數字PCR系統）和試劑均由達普生物提供。

1. Flodd-PCR 基本工作原理

如圖 1 所示，Flodd-PCR 的基本原理為在一次 dPCR 反應中引入四種對數稀釋的樣本濃度，每種稀釋倍數分別對應一種濃度指示劑熒光強度；在 PCR 后，液滴將被根據熒光強度拆分成四組，每組分別進行拷貝數定量。如此以來，一次 Flodd-PCR 實驗約等效于四組進行梯度稀釋的、平行的 dPCR 實驗，從而大幅提高了動態范圍。

為了實現上述概念，研究團隊首先設計并開發了一種微流控芯片，該芯片能夠實現對檢測樣本的連續對數梯度稀釋（20~1000 倍）和并行液滴生成（圖 2），Flodd-PCR 芯片一共有兩個入口，一個入口通入待檢測的模板 DNA 樣本和熒光指示劑，另一個入口通入 PCR 所需的其他試劑：酶、引物和探針等。上述兩種溶液經過連續梯度稀釋后將生成四組液滴，每組的液滴內 DNA 模板和熒光指示劑都稀釋到一個特定的濃度，同時又使其他試劑（如引物、探針和聚合酶等）保持在正常工作濃度。在熱循環后，利用商業化數字 PCR 液滴閱讀儀同時讀取 PCR 探針熒光和稀釋指示劑熒光，最終根據熒光指示劑將混合的液滴分成四個聚類，并分別計算拷貝數。

圖 1：Flodd-PCR 原理流程圖圖 2：Flodd-PCR 芯片設計及稀釋性能表征

2. Flodd-PCR 的動態范圍表現及臨床有效性驗證

接下來，研究團隊通過一系列實驗表征了 Flodd-PCR 的實際動態范圍，如圖 3 所示。實驗結果表明常規 dPCR 的動態范圍僅為 4~40,000 拷貝/µL，而 Flood-PCR 得益于連續梯度稀釋的功能，能夠將檢測動態范圍擴寬到 4~20,000,000 拷貝/µL。此外，團隊還將 Flodd-PCR 和其他的代表性高動態范圍 dPCR 方法進行了橫向比較，結果表明 Flodd-PCR 在實現超高動態范圍的同時并沒有增加液滴的數量，這意味著 Flodd-PCR 的液滴讀取和傳統 dPCR 一樣簡便。

圖 3：Flodd-PCR的動態范圍標準

最后，為了驗證 Flodd-PCR 在臨床檢測上的實用性，研究團隊將其應用于臨床患者樣本中人乳頭狀瘤病毒 HPV（16型）的定量檢測。HPV-16 作為高危病毒類型可以在 70% 的宮頸癌病例中發現，其病毒載量的動態區間可達 10⁷ 以上，遠超出了傳統 dPCR 的動態范圍（約 10⁵）。實驗結果表明（圖 4），得益于更高的動態范圍，Flodd-PCR 的定量成功率優于 dPCR，其定量結果也和金標準 qPCR 高度一致。以上結果表明，Flood-PCR 技術可以運用到真實的臨床案例中。

綜上所述，Flodd-PCR 是一種新穎的超高動態范圍的數字 PCR 技術，其巧妙地運用了微流控技術和熒光編解碼策略，實現了多種濃度樣本檢測的“多路復用”。該技術對傳染性疾病臨床樣本檢測性能表現優異， 如 HPV 檢測， 定量成功率優于普通數字 PCR 系統，且定量結果和金標準方法保持一致，具有臨床推廣應用價值。

圖 4：Flodd-PCR 對臨床 HPV 樣本的高動態范圍定量